Actividad antibacteriana de extractos de hongos aislados de raíces del mangle Rhizophora mangle (Rhizophoraceae) en Venezuela

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  Actividad antibacteriana de extractos de hongos aislados de raíces del mangle Rhizophora mangle (Rhizophoraceae) en Venezuela
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  761 Rev. Biol. Trop. (Int. J. Trop. Biol. ISSN-0034-7744) Vol. 55 (3-4): 761-765, September-December 2007 Actividad antibacteriana de extractos de hongos aislados de raíces del mangle  Rhizophora mangle  (Rhizophoraceae) en Venezuela Isabel Castillo-Machalskis 1* , Haydelba D’Armas 2 , Nora Malaver  3  & Maximiano Núñez 4 1 Instituto Oceanográfico de Venezuela, Universidad de Oriente (UDO–Sucre), Av. Universidad, Cerro Colorado, Código postal 6101, Cumaná, Venezuela.2 Universidad de Oriente, Núcleo de Sucre, Escuela de Ciencias, Departamento de Química, Venezuela. 3 Universidad Central de Venezuela, Instituto de Zoología Tropical, Laboratorio de Microbiología Ambiental. 4 Universidad de Oriente, Núcleo de Sucre, Instituto Oceanográfico de Venezuela, Departamento de Biología pesquera; [email protected] 12-X-2005. Corregido 27-X-2006. Aceptado 08-V-2007. Abstract:   Anti-bacterial activity of extracts from fungi collected from mangrove  Rhizophora mangle  (Rhizophoraceae) roots in Venezuela . The antibacterial activity of marine fungi extracts was evaluated by a test of efficiency. The fungi were previously inoculated in Malt Agar (EMA) extract with 50 % of seawater and growth for 60 days. Triplicate antibiograms were carried out with the extracts. An ANOVA I with a posteriori Duncan test were applied to the diameters of inhibition zones. The extracts of  Aspergillus ochraceus  3MCMC3 and  Penicillium citrinum  (14) 4MCMC16 present wide spectral antibacterial properties, inhibiting 100 % and 80 % of the developing germs, especially  Pseudomonas aeruginosa  9027. The extract of  Penicillium  (1) 3MLLC5 had the highest efficiency on this strain;  P. aeruginosa  9027 and  Escherichia coli  10536 were the most sensitive germs when treated with these extracts. These marine fungi can be an important source of antibacterial secondary metabolites. Rev. Biol. Trop. 55 (3-4): 761-765. Epub 2007 December, 28. Key words:  antibacterial activity, marine fungi, mangrove roots,  Rhizophora mangrove, Tacarigua Lagoon, Venezuela. La búsqueda de metabolitos provenientes de los microorganismos marinos, representa un campo de rápido crecimiento, y esto es debido  principalmente a la sospecha de que algunos de los metabolitos obtenidos de macroalgas e invertebrados pueden ser producidos por los microorganismos epibiontes (Kelekom 2002). De los trabajos de investigación referidos al aislamiento de hongos marinos con propie-dades antibacterianas pertenecientes a costas venezolanas se pueden mencionar los realiza-dos por Christophersen et al.  (1999), quienes obtuvieron extractos de 227 hongos marinos  bioactivos; Nielsen et al.  (1999) obtuvieron el depsido guisinol con actividad antibacteriana a  partir del hongo  Emericela unguis ; Malstrom et al.  (2000) mostraron que se establecen patrones de similitud entre los metabolitos secundarios  producidos por diferentes especies pertenecien-tes al género  Penicillium , lo cual complementa su identificación. Entre otros trabajos de inves-tigación que reportan metabolitos secundarios  bioactivos obtenidos de hongos marinos se encuentran los realizados por Sperry et al.  (1998) quienes caracterizaron un policétido al que denominaron epoxysorbicilinol obtenidos del hongo Tricoderma longibrachiatum aislado de la esponja  Haliclona  sp.; Jenkins et al. (1998) encontraron tres nuevos alfa-pironas, con acti-vidad antimicroalgal provenientes de hongos marinos filamentosos aislados del alga verde  Halimeda moline , Hoeller et al (1999), detec-taron actividad antimicrobiana en los hongos marinos Coniothyrium sp. y  Microphaeropsis    762 Rev. Biol. Trop. (Int. J. Trop. Biol. ISSN-0034-7744) Vol. 55 (3-4): 761-765, September-December 2007 sp. aislados de la esponja marina  Ectyplasia  perox  y del crustáceo  Myxilla  sp., respectiva-mente. En este sentido, los hongos marinos se han mostrado como fuentes de metabolitos secundarios novedosos con cualidades antibac-terianas (Jenkins et al. 1998, Sperry et al.  1998, Christophersen et al.  1999, Hoeller et al. 1999,  Nielsen et al. 1999, Malstrom et al.  2000, Lin et al.  2002, Shigemori et al.  2004).El presente trabajo de investigación se basa en la aplicación de una prueba de eficiencias antibacteriana a extractos de hongos marinos. Estos resultados permitieron establecer crite-rios para escoger la(s) cepa(s) que presente(n) características antibacterianas idóneas, para continuar estudios posteriores dirigidos al ais-lamiento de sustancias bioactivas con aplicabi-lidad farmacológica.MATERIALES Y MÉTODOS Procedencia de las muestras:  los hongos marinos fueron suministrados por el laborato-rio de Microbiología Ambiental del Instituto de Zoología Tropical (IZT) de la Universidad Central de Venezuela (UCV), los cuales fue-ron aislados de raíces del mangle  Rhizophora mangle  de la Laguna de Tacarigua, Edo. Miranda (entre los 10°18’00”N, 65°55’01”W y 10°12’05”N, 65°43’00”W), e identificados con la siguiente nomenclatura:  Penicillium sp.   (1) 3MLLC5,  Penicillium citrinum (14) 4MCMC16,  Penicillium citrinum (1) 4MCMC4,  Aspergillus niger   (1) 4MCMC8,  Aspergillus ochraceus  3MCMC3, Trichoderma viride (1) 4MCMC1, Syncephalastrum racemosum  (2) 4MCMC10. Elaboración de los cultivos y obtención de los extractos:  para realizar las extracciones, los hongos fueron inoculados en 100 ml de Agar Extracto Malta (EMA) con 50 % de agua de mar filtrada y envejecida, en matraces de 1 L en forma inclinada; transcurrido un tiempo de incubación de 60 días a 25 ºC, se procedió a lle-var a cabo la obtención de los extractos según la metodología expuesta por Christophersen et al. (1999), empleando para la extracción una solución de acetona/cloroformo/etanol (3:2:1). Actividad antibacteriana:  la prueba anti- bacteriana se llevó a cabo según el método de antibiograma descrito por Bauer et al.  (1966), empleando discos de papel Whatman Nº 3 de 10 mm de diámetro impregnados con 25 µ l de una solución de concentración de 40 mg/ml de los extractos a probar. Se utilizaron como gér-menes reveladores las cepas ATCC Gram nega-tivas:  Escherichia coli 10536,  Pseudomonas aeruginosa 9027, Salmonella typhimurium  14028; y las cepas Gram positivas:  Bacillus cereus  9634 y Staphylococcus aureus  25923. Los antibiogramas se elaboraron por triplicado con sus respectivos controles, con un período de preincubación de 12 h a 4 ºC e incubación de 24 a 48 h a 35 ºC; los halos de inhibición obtenidos se midieron con ayuda de un vernier digital (Mitutoyo; 0.01 mm de apreciación). Eficiencia de los extractos:  la eficien-cia de los extractos se determinó mediante comparación de los halos de inhibición de los extractos sobre cada microorganismo revela-dor, aplicando Análisis de Varianza de una vía. A los resultados que presentaron diferencias significativas, se les realizó la prueba a poste-riori Duncan (Zar 1984).RESULTADOSSe encontró que el extracto de  A. ochra-ceus 3MCMC3, exhibió el mayor espectro de acción inhibiendo el 100 % de los gérmenes reveladores, sin embargo, se evidenció una eficiencia antibacteriana similar sobre las bac-terias en estudio. En este sentido, el extracto de  P. citrinum  (14) 4MCMC16 inhibió el 80 % de los gérmenes reveladores, resultando ser más eficiente sobre  E. coli  10536, con promedio de halos de inhibición de 17.32 mm, el resto de las cepas bacterianas fueron inhibidas en forma similar (ANOVA I α =0.01; F=511.19; Duncan α =0.01) (Cuadro 1, Fig. 1).  763 Rev. Biol. Trop. (Int. J. Trop. Biol. ISSN-0034-7744) Vol. 55 (3-4): 761-765, September-December 2007 Por otra parte se determinó que  P. aeru- ginosa 9027 y  E. coli 10536 resultaron ser inhibidos por el 100 % (7) y 85.71 % (6) de los extractos ensayados, presentando el mismo grado de efectividad antibacteriana sobre  E. coli 10536; sin embargo, el extracto obtenido de  Penicillium  sp. (1) 3MLLC5 resultó ser el más eficiente sobre  P. aeruginosa 9027, con  promedio de los halos de inhibición de 33.56 mm; mientras que los extractos de  A. ochraceus 3MCMC3 y  P. citrinum  (1) 4MCMC4 resulta-ron ser los menos eficientes sobre este germen revelador, con promedios de los halos de inhibición de 13.4 mm y 14.86 mm ANOVA I ( α =0.01; F=31.49); Duncan ( α =0.01). (Cuadro 1, Fig. 2). DISCUSIÓNLos resultados obtenidos en el presen-te estudio no concuerdan totalmente con los encontrados por Christophersen et al.  (1999), quienes encontraron cepas de hongos mari-nos pertenecientes a los géneros  Penicillium o  Aspergillus , las cuales inhibieron solo el crecimiento de S. aureus 25923 o Vibrio para-haemolyticus  17802, también observaron que estos hongos no inhibieron el crecimiento de  Escherichia coli 25922 y  P. aeruginosa  27853. De manera similar, Nielsen et al. (1999) encon-traron que el metabolito Guisinol aislado del hongo marino  Emericella unguis  inhibió el crecimiento de una cepa de S. aureus , a su vez CUADRO 1  Espectro de acción de extractos de hongos marinos sobre bacterias ATCC  TABLE 1  Action spectrum for extracts from marine fungi on ATCC bacteria HONGOS MARINOSBACTERIAS    B  a  c   i   l   l  u  s  c  e  r  e  u  s    A   T   C   C   9   6   3   4    P .  a  e  r  u  g   i  n  o  s  a    A   T   C   C   9   0   2   7    E  s  c   h  e  r   i  c   h   i  a  c  o   l   i    A   T   C   C   1   0   5   3   6    S .  a  u  r  e  u  s    A   T   C   C   2   5   9   2   3    S .   t  y  p   h   i  m   i  r   i  u  m     A   T   C   C   1   4   0   2   8   B  a  c   t  e  r   i  a  s  p  a   t   ó  g  e  -  n  a  s   i  n   h   i   b   i   d  a  s   (   %   )  Penicillium sp.   (1) 3MLLC5+++++60  Penicillium citrinum  (14) 4MCMC16++40  Penicillium citrinum  (1) 4MCMC4++++80  Aspergillus niger (1) 4MCMC8+20  Aspergillus ochraceus 3MCMC3+++++++100 Sincephalastrum racemosum  (2) 4MCMC10++40 Trichoderma viride  (1) 4MCMC1++40Porcentaje de inhibición de los extractos de hongos marinos (%)42.8610085.7128.5714.29Valores de halos de inhibición: 11.00-22.00 mm (+); 23.00-30.00 mm (++); 31.00-35.00 mm (+++).  764 Rev. Biol. Trop. (Int. J. Trop. Biol. ISSN-0034-7744) Vol. 55 (3-4): 761-765, September-December 2007 no se detectó inhibición en una cepa de V. para-haemolyticus ; en ambos trabajos de investiga-ción el extracto y/o metabolito obtenido de los hongos marinos ensayados manifestaron ser de espectro limitado. No obstante, en el presente estudio  A. ochraceus 3MCMC3 y  P. citrinum  (14) 4MCMC16 inhibieron el 100 % y 80 % de los gérmenes reveladores respectivamente, los cuales exhibieron un amplio espectro.Puede inferirse que el amplio espectro detec-tado en  A. ochraceus 3MCMC3 y  P. citrinum  (14) 4MCMC16, pudiera deberse en principio, a que el área de la Laguna de Tacarigua presenta un impacto antropogénico elevado, favorecien-do el ingreso de grupos de bacterias coliformes a los microambientes de donde se aislaron los hongos marinos; unido a este hecho, al aumento de nutrientes y contaminantes, probablemente estimulen el desarrollo de cualidades degradati-vas y transformadoras por parte de las poblacio-nes microbianas (Atlas y Bartha 2002, Castillo y Malaver 2003); estos hechos posiblemente  propicien la producción de metabolitos secun-darios destinados al control de las poblaciones microbianas alóctonas por parte de las comuni-dades microbianas preestablecidas (De Freitas y Fredrickson 1978, Fredrickson y Stephanopoulos 1981). También la halogenación de los meta- bolitos secundarios en el medio marino genera variabilidad en el grupo de toxinas y enzimas pro-venientes de microorganismos marinos (Stander 2000). Se estima, que la combinación de todos estos factores pudiera incidir en la variabilidad de los metabolitos secundarios producidos por este grupo de hongos marinos lo cual probablemente sea la causa del amplio espectro obtenido.En forma similar, el género  Pseudomonas  constituye parte de la flora bacteriana del suelo y de los fondos marinos (Atlas y Bartha 2002), por lo que puede darse el hecho de que algunas poblaciones de hongos allí estableci-das produzcan metabolitos secundarios desti-nados al control de poblaciones perteneciente a este género bacteriano,   lo cual coincide con los resultados obtenidos en el presente estu-dio, ya que  P. aeruginosa  9027, resultó ser inhibida por todos los extractos de hongos marinos ensayados. Fig. 1. Eficiencia de extractos crudos de hongos mari-nos sobre  P. aeruginosa  ATCC 9027; los datos fueron normalizados por la expresión log 10 , ANOVA I ( α =0.01; F=31.49); Duncan ( α =0.01).Fig. 1. Efficiency of the raw extract of marine fungi on  Pseudomonas aeruginosa  ATCC 9027; the data were normalized by the expression log 10 , ANOVA I ( α =0.01;  F  =31.49); Duncan ( α =0.01).Fig. 2. Eficiencia del extracto crudo de  Penicillium sp.   (1) 3MLLC5 sobre bacterias ATCC; los datos fueron normal-izados por la expresión e x ;   ANOVA I ( α =0.01; F=511.19), Duncan ( α =0.01). Fig. 2. Efficiency of the raw extract of  Penicillium sp. (1) 3MLLC5 on ATCC bacteria; the data were normalized by the expression e x ; ANOVA I ( α =0.01; F=511.19); Duncan ( α =0.01).  765 Rev. Biol. Trop. (Int. J. Trop. Biol. ISSN-0034-7744) Vol. 55 (3-4): 761-765, September-December 2007 Los extractos obtenidos de  A. ochraceus 3MCMC3 y  P. citrinum  (1) 4MCMC4, se muestran como fuentes potenciales para el ais-lamiento de metabolitos secundarios con pro- piedades antibacterianas de amplio espectro, y el extracto de  Penicillium sp. (1) 3MLLC5 con  propiedades inhibidoras de cepas pertenecien-tes a  P. aeruginosa. Basados en los resultados obtenidos se recomienda aislar sustancias bioactivas con  propiedades antibacterianas, provenientes de los extractos seleccionados y determinar sus estructuras moleculares.RESUMEN La actividad antibacteriana de extractos de hongos marinos se evaluó mediante una prueba de eficiencia,  para tal fin los hongos fueron inoculados en medio Agar Extracto Malta (EMA) con 50 % de agua de mar y período de crecimiento de 60 días. Se obtuvieron extractos con una solución de acetona/cloroformo/etanol (3:2:1). La fase orgánica se trató a presión reducida con rotaevaporador (baño de María incorporado a 40 ºC). Con los extractos se realizaron antibiogramas por triplicado. Se midieron los diámetros de los halos de inhibición y se les aplicó una  prueba de eficiencia empleando un ANOVA I, y prueba a posteriori Duncan. Los extractos de  Aspergillus ochra-ceus 3MCMC3 y  Penicillium citrinum (14) 4MCMC16  presentan propiedades antibacterianas de amplio espectro, inhibiendo el 100 % y 80 % de los gérmenes reveladores, con énfasis hacia la inhibición de  Pseudomonas aeruginosa 9027, en especial el extracto de  Penicillium  (1) 3MLLC5  presentó la mayor eficiencia sobre esta cepa; también se encontró que  P. aeruginosa 9027 y  Escherichia coli  10536 fueron ser los gérmenes reveladores más sensibles. Los hongos marinos seleccionados se perfilan como una fuente de metabolitos secundarios antibacterianos. Palabras clave:  actividad antibacteriana, hongos mari-nos, raíces de mangle,  Rhizophora mangle , Laguna de Tacarigua, Venezuela. REFERENCIAS Atlas, R. & R. Bartha. 2002. Ecología microbiana y microbiología ambiental. Addison Wesley, Pearson Educación, Madrid, España. Bauer, A., W. Kirby, I. Sherris & M. Turk. 1966. Antibiotic susceptibility testing by standardized single disk method. Am. J. Clin. Pathol. 45: 493-496.Christophersen, C., O. Crescente, J. Frisvad, L. Gram, J.  Nielsen, P. Nielsen & L. Rahbaek. 1999. Antibacterial activity of marine-derived fungi. Mycopathología 143:135-138.De Freitas, M. & G. Fredrickson. 1978. Inhibition as a factor in the maintenance of the diversity of microbial ecosystems. J.G. Microbiol. 106: 307-320.Fredrickson, A. & G. Stephanopoulos. 1981. Microbial competition. Science 213: 972-979.Hoeller, U., G. Koenig, & A. Wright. 1999. Three new metabolites from marine-derived fungi of the genera Coniothyrium and  Microsphaeropsis.  J. Nat. Prod. 62: 114-118.Kelecom, A. 2002. Secondary metabolites from marine microorganisms. An. Acad. Bras. Cienc. 74: 151-170.Lin, Y., X. Wu, Z. Deng, J. Wang, S. Zhou, L. Vrijmoed & E. Gareth Jonesc. 2002. The metabolites of the man-grove fungus Verruculina enalia  No.2606 from a salt lake in the Bahamas. Phytochemistry 59: 469-471. Nielsen, J., P. Nielsen & J. Frisvad. 1999. Fungal depside, guisinol, from a marine derived strain of  Emericella unguis .   Phytochemistry 50:263-265.Shigemori, H., Y. Kasai, K. Komatsu, M. Tsuda, Y. Mikami & J. Kobayashi. 2004. Sporiolides A and B, new cytotoxic twelve-membered macrolides from a marine-derived fungus Cladosporium species. Mar. Drugs. 2:164-169.Sperry, S., G. Samuels & P. Crew. 1998. Vertinoid polik-etides from the saltwater culture of the fungus Tricoderma longibrachiatum  separated from a  Haliclona  marine sponge. J. Org. Chemist. 63: 10 011-10 014.Stander, M., P. Steyn, A. Lübben, A. Miljkovic, P. Mantle & G. Marais. 2000. Influence of halogen salts on the  production of the ochratoxins by  Aspergillus ochra-ceus  Wilh. J. Agric. Food Chem. 48: 1865.Zar, J. 1984. Biostadistical Analysis. Prentice Hall, Nueva Jersey, EEUU.
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